Preview

Российский иммунологический журнал

Расширенный поиск

Модуляция функциональной активности тучных клеток холинергическими агентами

https://doi.org/10.31857/S102872210002406-1

Полный текст:

Аннотация

Являясь иммунокомпетентными клетками, мастоциты имеют ряд свойств, характерных для клеток нервной системы, отчего их нередко рассматривают в качестве ключевых посредников между интегрирующими системами организма. Учитывая нарастающий интерес научного сообщества к проблеме противовоспалительной функции парасимпатической нервной системы, вопрос о регуляторном воздействии холинергических нервных волокон на работу тучных клеток изучен недостаточно. В качестве модели тучных клеток использовали клетки перевиваемой линии тучных клеток человека HMC-1. Результаты нашего исследования показали, что карбахол (Cch), функциональный аналог ацетилхолина (АХ), проявляет одновременно свойства либератора гистамина и супрессора IgG-индуцированной активации тучных клеток. Такое двойственное влияние нейромедиатора может указывать на наличие холинергического тонуса, поддерживающего возбуждение тучных клеток на определенном уровне. Показано, что модулирующее влиянии Cch на функциональную активность клеток линии HMC-1 реализуется через никотиновые ацетилхолиновые рецепторы (н-АХР). Полученные нами данные способствуют углублению представлений о механизмах негативной регуляции работы тучных клеток.

Об авторах

Н. А. Кутукова
Институт экспериментальной медицины
Россия


П. Г. Назаров
Институт экспериментальной медицины; Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова
Россия


Список литературы

1. Быков В. Л. Цитология и общая гистология. Сотис, СПб, 2007, 519 с. [Bykov V. L. Cytology and General Histology. St. Petersburg: Sotis, 2007, 519 p.].

2. Gilfi llan A. M., Austin S. J., Metcalfe D. D. Mast cell biology: introduction and overview. Adv. Exp. Med. Biol. 2011, 716, 2–12.

3. Bauer O., Razin E. Mast cell-nerve interactions. News Physiol. Sci. 2000, 15, 213–18.

4. Kle? H. P., Bienenstock J. Signifi cance of conversation between mast cells and nerves. Allergy Asthma Clin. Immunol. 2005, 1 (2), 65–80.

5. Forsythe P., Bienenstock J. The mast cell-nerve functional unit: a key component of physiologic and pathophysiologic response. Chem. Immunol. Allergy 2012, 98, 196–221.

6. Moon T. C., St Laurent C. D., Morris K. E., Marcet C., Yoshimura T., Sekar Y., Befus A. D. Advances in mast cell biology: new understanding of heterogeneity and function. Mucosal Immunol. 2010, 3 (2), 111–28.

7. Guzman-Mejia F., Lopez-Rubalcava C., Gonzalez-Espinosa C. Stimulation of nAchR?7 receptor inhibits TNF synthesis and secretion in response to LPS treatment of mast cells by targeting ERK1/2 and TACE activation. J. Neuroimmune Pharmacol. 2018, 13 (1), 39–52.

8. Tore F., Tuncel N. Mast cells: target and source of neuropeptides. Curr. Pharm. Des. 2009, 15 (29), 3433–3445.

9. Borovikova L. V., Ivanova S., Zhang M., Yang H., Botchkina G. I., Watkins L. R., Wang H., Abumrad N., Eaton J. W., Tracey K. J. Vagus nerve stimulation attenuates the systemic infl ammatory response to endotoxin. Nature 2000, 405 (6785), 458–462.

10. Tracey K. J. The infl ammatory refl ex. Nature 2002, 420 (6917), 853–859.

11. Wang H., Liao H., Ochani M., Justiniani M., Lin X., Yang L., Al-Abed Y., Wang H., Metz C., Miller E. J., Tracey K. J., Ulloa L. Cholinergic agonists inhibit HMGB1 release and improve survival in experimental sepsis. Nat. Med. 2004, 10 (11), 1216–1221.

12. Huston J. M., Ochani M., Rosas-Ballina M., Liao H., Ochani K., Pavlov V. A., Gallowitsch-Puerta M., Ashok M., Czura C. J., Foxwell B., Tracey K. J., Ulloa L. Splenectomy inactivates the cholinergic antiinfl ammatory pathway during lethal endotoxemia and polymicrobial sepsis. J. Exp. Med. 2006, 203 (7), 1623–1628.

13. Shore P. A., Burkhalter A., Jr. Cohn V. H. A method for the fl uorometric assay of histamine in tissues. J. Pharmacol. Exp. Ther. 1959, 127, 182–186.

14. Sudheer P. S., Hall J. E., Donev R., Read G., Rowbottom A., Williams P. E. Nicotinic acetylcholine receptors on basophils and mast cells. Anaesthesia 2006, 61(12), 1170–1174.

15. Radosa J., Dyck W., Goerdt S., Kurzen H. The cholinergic system in guttate psoriasis with special reference to mast cells. Exp. Dermatol. 2011, 20 (8), 677–679.

16. Пронина А. П. Влияние факторов острой фазы воспаления на активацию базофилов и тучных клеток in vitro. Автореф. дисс. канд. биол. наук. СПб 2011, 19 c. [Pronina A. P. Infl uence of acute infl ammation phase factors on the activation of basophils and mast cells in vitro. Abstract. Dissertation for the degree of Cand. Biol. Sci. St. Petersburg, 2011, 19 c.]

17. Nazarov P. G., Pronina A. P. The infl uence of cholinergic agents on histamine release from HMC-1 human mast cell line stimulated with IgG, C-reactive protein and compound 48/80. Life Sci 2012, 91 (21–22), 1053–1057.

18. Пронина А. П., Назаров П. Г. Активация базофилов крови человека лигандами Fc-gamma-рецепторов: холинергический тюнинг. Цитокины и воспаление 2008, 7 (4), 40–46. [Pronina A. P., Nazarov P. G. Activation of human blood basophiles by the Fc? receptor ligands: a cholinergic tuning. Cytokines and Infl ammation 2008, 7 (4), 42–48].

19. Пронина А. П., Назаров П. Г. Влияние пентраксинов и агрегированного IgG на выброс гистамина из базофилов человека при блокаде АХ-рецепторов. Росс. аллергол. журн 2008, 1 (1), 237–238. [Pronina A. P., Nazarov P. G. Eff ect of pentraxines and aggregated IgG on the release of histamine from human basophils in the blockade of acetylcholine receptors. Russian Allergol. J. 2008, 1(1), 237–238.]

20. Nazarov P. G., Pronina A. P., Trulioff A. S. C-reactive protein: Fc receptor-mediated eff ects on human peripheral blood basophils. In: Basophil Granulocytes. Ed. P. K. Vellis. NY: Nova Science Publishers, 2009, 95–121

21. Nazarov P. G., Pronina A. P., Trulioff A. S. C-reactive protein: Fc-gamma receptor-mediated eff ects on human peripheral blood basophils in vitro. In: C-Reactive Protein: New Re-search. Ed. S. Nagasawa. NY: Nova Science Publishers, 2009, 147–169.

22. Reinheimer T., Baumgartner D., Hohle K. D., Racke K., Wessler I. Acetylcholine via muscarinic receptors inhibits histamine release from human isolated bronchi. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1997, 156 (2 Pt 1), 389–395.

23. Reinheimer T., Mohlig T., Zimmermann S., Hohle K. D., Wessler I. Muscarinic control of histamine release from airways. Inhibitory M1-receptors in human bronchi but absence in rat trachea. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2000, 162(2 Pt 1), 534–538.


Для цитирования:


Кутукова Н.А., Назаров П.Г. Модуляция функциональной активности тучных клеток холинергическими агентами. Российский иммунологический журнал. 2018;12(3):335-341. https://doi.org/10.31857/S102872210002406-1

For citation:


Kutukova N..., Nazarov P... Modulation of functional activity of mast cells by cholinergic agents. Russian Journal of Immunology. 2018;12(3):335-341. (In Russ.) https://doi.org/10.31857/S102872210002406-1

Просмотров: 36


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1028-7221 (Print)